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        內(nèi)毒素檢測(cè)試劑盒(基因重組熒光法)使用說(shuō)明書(shū)

        發(fā)布時(shí)間: :2022-07-22 17:10 瀏覽次數(shù): :
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         【目錄號(hào)】RAL48TSRAL48T

        【名稱】

                      通用名稱:內(nèi)毒素檢測(cè)試劑盒(基因重組熒光法)

        英文名稱:BioendoTM Recombinant Factor C Endotoxin Test Kit (Fluorescent Assay)

        【用途】

        用于體外檢測(cè)革蘭氏陰性細(xì)菌內(nèi)毒素。不可用于疾病診斷。

        【檢測(cè)原理】

        基因重組熒光法采用《中國(guó)藥典》2020年版注射劑安全性檢查法應(yīng)用指 導(dǎo)原則重組C因子法檢測(cè)細(xì)菌內(nèi)毒素。使用基因重組技術(shù),在真核 細(xì)胞表達(dá)鱟血細(xì)胞中與內(nèi)毒素起反應(yīng)的絲氨酸蛋白酶催化級(jí)聯(lián)蛋白。其 中重組C因子與內(nèi)毒素結(jié)合之后,由無(wú)活性的蛋白酶原轉(zhuǎn)變成具有生物 活性的蛋白酶,識(shí)別并催化下游熒光底物產(chǎn)生熒光信號(hào)。熒光信號(hào)的強(qiáng) 度和內(nèi)毒素濃度成正相關(guān),通過(guò)與標(biāo)準(zhǔn)曲線的比較,計(jì)算出樣品中內(nèi)毒 素的濃度。

        【儲(chǔ)存條件及有效期】

        2-8℃保存,有效期兩年。

        【注意事項(xiàng)】

        (1) 該試劑盒用于體外細(xì)菌內(nèi)毒素的定量檢測(cè),嚴(yán)禁用于檢測(cè)臨床樣本內(nèi)毒素或作為診斷人類疾病的輔助工具,嚴(yán)禁試劑以任何途徑進(jìn)入機(jī)  體。

        (2) 接觸試劑及供試品的所有器皿必須是無(wú)熱原的,玻璃器皿和材料可以250℃30分鐘滅菌處理。試驗(yàn)過(guò)程應(yīng)防止微生物的污染。

        (3) 該說(shuō)明書(shū)中的無(wú)熱原指內(nèi)毒素濃度小于0.001 EU/ml

        4)供試品溶液和重組因子試劑混合后溶液的pH值應(yīng)在6.0~8.0之間, 若超出此范圍,需用無(wú)熱原的緩 沖液、0.1N氫氧化鈉或0.1N鹽酸調(diào)節(jié)。

        5)塑料管不建議用于內(nèi)毒素稀釋,稀釋的內(nèi)毒素溶液靜置時(shí)間超過(guò) 10分鐘,用前在旋渦混合器上劇烈振搖1分鐘,放置4小時(shí)以上的內(nèi)毒素 溶液應(yīng)丟棄。

        (6) 重組因子試劑必須用配套的檢測(cè)緩沖液溶解;不要用旋渦混合器劇烈振搖;溶解的重組因子試劑應(yīng)在10分鐘內(nèi)使用;若采用多道移液器, 將溶解的重組因子試劑轉(zhuǎn)移到無(wú)熱原加樣槽,并輕輕搖勻。

        (7) 檢測(cè)軟件相關(guān)參數(shù)可以根據(jù)《質(zhì)檢報(bào)告》進(jìn)行設(shè)定,也可以根據(jù)實(shí)際情況在范圍內(nèi)進(jìn)行調(diào)整,以給出標(biāo)準(zhǔn)曲線的相關(guān)系數(shù)最佳為宜。

        【樣本采集和保存】

        樣本采集時(shí)必須小心操作以避免微生物或內(nèi)毒素污染。試驗(yàn)所用的器皿 需經(jīng)處理,以去除可能存在的外源性內(nèi)毒素。耐熱器皿常用干熱滅菌法

        250℃30分鐘以上)去除,也可采用其他確證不干擾細(xì)菌內(nèi)毒素檢查 的適宜方法。若使用塑料器具,如微孔板和與微量加樣器配套的吸頭 等,應(yīng)選用標(biāo)明無(wú)內(nèi)毒素并且對(duì)試驗(yàn)無(wú)干擾的器具。

        樣本應(yīng)儲(chǔ)存于細(xì)菌不會(huì)繁殖或內(nèi)毒素水平不會(huì)改變的條件下。比如,樣 本可以2~8℃臨時(shí)存儲(chǔ)(不到24小時(shí)),或-10℃以下長(zhǎng)期存儲(chǔ)(24小時(shí) 以上)。適當(dāng)?shù)娜萜骱痛鎯?chǔ)條件需用戶自行驗(yàn)證。

         

        【供試品溶液的制備】

        某些樣本需進(jìn)行復(fù)溶、稀釋或在水性溶液中浸提制成供試品溶液。必要 時(shí),可調(diào)節(jié)被測(cè)溶液(或其稀釋液)的pH值,一般供試品溶液和重組因 子試劑混合后溶液的pH值在6.0~8.0的范圍內(nèi)為宜,可使用適宜的酸、 堿溶液 或緩沖液調(diào)節(jié)pH值。酸或堿溶液須用細(xì)菌內(nèi)毒素檢查用水在已去


        除內(nèi)毒素的容器中配制。緩沖液必須經(jīng)過(guò)驗(yàn)證不含內(nèi)毒素和干擾因子。

         

        【內(nèi)毒素限值的確定】

        藥品、生物制品的細(xì)菌內(nèi)毒素限值(L)一般按以下公式確定:

        L= K / M

        式中                                                       L為供試品的細(xì)菌內(nèi)毒素限值,一般以EU/mlEU/mgEU/U(活性單位)表示;                                                 K為人每千克體重每小時(shí)最大可接受的內(nèi)毒素劑量,以EU/kg·h)表 示,注射劑K=5 EU/ kg·h),放射性藥品注射劑K=2.5 EU/kg·h), 鞘內(nèi)用注射劑K=0.2EU/kg·h);                            M為人用每千克體重每小時(shí)的最大供試品劑量,以ml/kg·h)、mg/kg·h)或U/kg·h)表示,人均體重按60kg計(jì)算,人體表面積按 1.62m 計(jì)算。注射時(shí)間若不足1小時(shí),按1小時(shí)計(jì)算。供試品每平方米體表面積2 劑量乘以0.027即可轉(zhuǎn)換為每千克體重劑量(M)。

        按人用劑量計(jì)算限值時(shí),如遇特殊情況,可根據(jù)生產(chǎn)和臨床用藥實(shí)際情況做必要調(diào)整,但需說(shuō)明理由。

        【確定最大有效稀釋倍數(shù)(MVD)】

        最大有效稀釋倍數(shù)數(shù)是指在試驗(yàn)中供試品溶液被允許達(dá)到稀釋的最大倍數(shù)(1→MVD),在不超過(guò)此稀釋倍數(shù)的濃度下進(jìn)行內(nèi)毒素限值的檢 測(cè)。用以下公式來(lái)確定MVD

        MVD = c L

        式中                      L為供試品的細(xì)菌內(nèi)毒素限值;

        c為供試品溶液的濃度,當(dāng)LEU/mgEU/U表示時(shí),c的單位需為mg/mlU/ml,當(dāng)LEU/ml表示時(shí),則c等于1.0ml/ml。如需計(jì)算在MVD時(shí)的供試品濃度,即最小有效稀釋濃度,可使用公式c=λ/L λ為所使用的標(biāo)準(zhǔn)曲線上最低的內(nèi)毒素濃度。

        【用法】

        1. 試劑與器材

        1.1 試劑

        重組因子試劑、檢測(cè)緩沖液、細(xì)菌內(nèi)毒素工作標(biāo)準(zhǔn)品、細(xì)菌內(nèi)毒素檢查用水。

        1.2 器材:

        無(wú)熱原試管、無(wú)熱原吸頭、無(wú)熱原96孔微孔板(或可拆式板條); 旋渦混合器、移液器、試管架;

        帶溫育系統(tǒng)的熒光微孔板讀數(shù)儀器及配套軟件。

        2. 實(shí)驗(yàn)方法                  2.1熒光測(cè)定儀器的程序及模板設(shè)定

        以熒光微孔板讀數(shù)儀FLUOROSKAN為例: (1)溫度設(shè)定:孵育溫度37ºC    (2)振板設(shè)定:中速、振板15

        (3)讀數(shù)波長(zhǎng)設(shè)定:當(dāng)使用熒光微孔板讀數(shù)儀FLUOROSKAN時(shí),推薦使用激發(fā)波長(zhǎng)355nm/發(fā)射波長(zhǎng)460nm。讀取反應(yīng)開(kāi)始和30分鐘時(shí)的熒光信號(hào)儀。

        2.2 內(nèi)毒素標(biāo)準(zhǔn)溶液配制

        為了計(jì)算未知樣品中內(nèi)毒素濃度,每個(gè)試驗(yàn)必須引用一個(gè)有效的標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        用標(biāo)準(zhǔn)內(nèi)毒素配成溶液,制成至少3個(gè)濃度的稀釋液(相鄰濃度間稀釋倍數(shù)不得大于10),最低濃度不得低于所用重組因子試劑的標(biāo)示檢測(cè)限。


        1)取細(xì)菌內(nèi)毒素工作標(biāo)準(zhǔn)品1瓶,開(kāi)啟后加入適量細(xì)菌內(nèi)毒素檢查用水,置旋渦混合器上劇烈振搖15分鐘,配制濃度為50EU/ml的內(nèi)毒素標(biāo)準(zhǔn)品溶液。

        2)取無(wú)熱原試管4支并標(biāo)記,細(xì)菌內(nèi)毒素檢查用水作稀釋液,將50EU/ml的內(nèi)毒素標(biāo)準(zhǔn)品溶液依次梯度稀釋,配制為5.0EU/ml0.5EU

        /ml0.05EU/ml0.005EU/ml4個(gè)濃度。各個(gè)濃度內(nèi)毒素標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液配制時(shí),均應(yīng)在旋渦混勻器上混勻至少1分鐘。內(nèi)毒素標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液的配制可參考下表:

         

        內(nèi)毒素濃度

        EU/ml

        稀釋液體積

        ml

        加入內(nèi)毒素濃度

        EU/ml

        加入內(nèi)毒素體積

        ml

        5.0

        0.9

        50

        0.1

        0.5

        0.9

        5.0

        0.1

        0.05

        0.9

        0.5

        0.1

        0.005

        0.9

        0.05

        0.1

         

        上表提出了一種適用于試劑盒的細(xì)菌內(nèi)毒素工作標(biāo)準(zhǔn)品配制系列濃度內(nèi)毒素標(biāo)準(zhǔn)品溶液的方案。并非所有的內(nèi)毒素標(biāo)準(zhǔn)品溶液都必須用于生成標(biāo)準(zhǔn)曲線。可以使用替代稀釋方案,也可以使用其他確定效價(jià)的內(nèi)毒 素。用戶可以根據(jù)具體的產(chǎn)品需求選擇標(biāo)準(zhǔn)曲線范圍。數(shù)據(jù)表明,特定范圍標(biāo)準(zhǔn)曲線可以提高測(cè)試樣本內(nèi)毒素預(yù)測(cè)值的準(zhǔn)確性。

        2.3 重組因子試劑溶解

        重組因子試劑是由真核細(xì)胞表達(dá)的重組因子蛋白和熒光基質(zhì)制備的冷凍干燥品。使用前,每瓶重組因子試劑必須按標(biāo)示量用配套的檢測(cè)緩沖 液。如果使用量超過(guò)一瓶,將兩瓶或更多瓶分別復(fù)溶,混合后輕輕搖 勻,靜置至溶液澄清后使用。

        2.4 實(shí)驗(yàn)操作

        1)預(yù)熱熒光微孔板讀數(shù)儀FLUOROSKAN設(shè)置檢測(cè)溫度為 37℃

        2)取無(wú)熱原黑色微孔板或所需數(shù)量的黑色微孔板條,微孔板條裝至 微孔板架上。相應(yīng)孔中分別加入細(xì)菌內(nèi)毒素檢查用水(作為陰性對(duì)   照)、內(nèi)毒素標(biāo)準(zhǔn)品溶液或稀釋液,供試品溶液等各100μl,分別2~3個(gè)重復(fù)。

        (3) 微孔板放入預(yù)熱的熒光微孔板讀數(shù)儀FLUOROSKAN中, 37℃孵育至少10分鐘。

        (4)  取出微孔板, 每孔小心加入50μl重組因子試劑(避免產(chǎn)生氣泡!)。

        (5) 將微孔板放入熒光微孔板讀數(shù)儀FLUOROSKAN中(不要蓋上微孔 板蓋!),點(diǎn)擊檢測(cè)軟件界面確定按鈕,運(yùn)行檢測(cè)程 序。

        6)檢測(cè)程序結(jié)束后,進(jìn)行數(shù)據(jù)處理和數(shù)據(jù)分析。

        3. 數(shù)據(jù)處理

        1)設(shè)定讀數(shù)之前震蕩15s,隨后靜置孵育3min;讀數(shù)之后,孵育總時(shí)長(zhǎng)30min

        2)設(shè)定激發(fā)波長(zhǎng)355nm,發(fā)射波長(zhǎng)460nm

        3)建立標(biāo)準(zhǔn)曲線

        LgY= A* lgB +a,其中:Y30min中熒光值減去起始的熒光值,B 為內(nèi)毒素的濃度,A為直線斜 率aY軸截距。

        4)使用軟件可以線性回歸自動(dòng)計(jì)算出結(jié)果。

        (5) 如果線性相關(guān)系數(shù)|r|≥0.980,則可以建立多項(xiàng)式模型制作標(biāo)準(zhǔn) 曲線,計(jì)算樣品內(nèi)毒素濃度。

        6)當(dāng)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)同時(shí)滿足如下三個(gè)條件時(shí)實(shí)驗(yàn)才有效:

        標(biāo)準(zhǔn)曲線的濃度點(diǎn)≥3,線性相關(guān)系數(shù)|r|≥0.980

        標(biāo)準(zhǔn)曲線最低點(diǎn)的熒光值大于陰性對(duì)照的熒光值;

        供試品平行管的平均值在標(biāo)準(zhǔn)曲線的區(qū)間內(nèi)。


        【供試品的干擾試驗(yàn)】

        1. 以下情況需進(jìn)行供試品的干擾實(shí)驗(yàn):

        1)當(dāng)對(duì)新藥或無(wú)內(nèi)毒素檢查項(xiàng)的品種建立內(nèi)毒素檢查法時(shí),必須進(jìn)行干擾試驗(yàn);

        2)當(dāng)試劑、供試品的來(lái)源、配方、生產(chǎn)工藝改變,或試驗(yàn)環(huán)境中發(fā) 生了任何有可能影響試驗(yàn)結(jié)果的變化時(shí),必須重新進(jìn)行干擾試驗(yàn);

        3)當(dāng)供試品中可能存在對(duì)內(nèi)毒素檢測(cè)試驗(yàn)的干擾物質(zhì)時(shí),須進(jìn)行干擾試驗(yàn)。

        2. 干擾實(shí)驗(yàn):

        1)選擇標(biāo)準(zhǔn)曲線中點(diǎn)或一個(gè)靠近中點(diǎn)的內(nèi)毒素濃度(設(shè)為λm),作為供試品干擾試驗(yàn)中添加的內(nèi)毒素濃度,如采用標(biāo)準(zhǔn)曲線為505 0.50.050.005EU/ml系列時(shí),可以用供試品配制0.5EU/ml內(nèi)毒素濃 度作為實(shí)驗(yàn)的供試品陽(yáng)性對(duì)照。

        2)用供試品溶液配制濃度為λm的內(nèi)毒素溶液(即含λm內(nèi)毒素的供

        試品陽(yáng)性對(duì)照),測(cè)量出該溶液的內(nèi)毒素濃度,稱為Cs

        3測(cè)量出未添加外源內(nèi)毒素的供試品溶液內(nèi)毒素濃度, 稱為C t

        4)計(jì)算該試驗(yàn)條件下的回收率:R =Cs –Ct / λm × 100%。

        5)當(dāng)R50%~200%之間,則認(rèn)為在此試驗(yàn)條件下供試品溶液不存在明顯干擾作用。

        6)當(dāng)R50%~200%之外,需對(duì)供試品進(jìn)行系列稀釋或進(jìn)行其它處 理消除干擾,每一稀釋溶液都重復(fù)步驟2~4,直到內(nèi)毒素的回收率在50%~200%之間。選擇回收率最接近100%的稀釋倍數(shù)進(jìn)行內(nèi)毒素檢 測(cè)。

         

        【參考文獻(xiàn)】

        1. Bang, F.B. A bacterial disease of Limulus polyphemus. Bull. Johns Hopkins Hosp. 98:325 (1956).

        2. Levin, J. and F.B. Bang. The role of endotoxin in the extracellular coagulation of Limulus blood. Bull. Johns Hopkins Hosp. 115:265 (1964).

        3. Levin, J. and F.B. Bang. A description of cellular coagulation in the Limulus. Bull Johns Hopkins Hosp. 115:337 (1964).

        4. Levin, J. and F.B. Bang. Clottable protein in Limulus: its localization and kinetics of its coagulation by endotoxin. Thromb. Diath. Haemorrh. 19:186 (1968).

        5. Solum, N.O. Some characteristics of the clottable protein of Limulus polyphemus blood cells. Thromb. Diath. Haemorrh. 23:170 (1970).

        6. Solum, N.O. The coagulogen of Limulus polyphemus hemocytes. A comparison of the clotted and non-clotted forms of the molecule. Thromb. Res. 2:55 (1973).

        7.  Young, N.S., J. Levin, and R.A. Prendergast. An invertebrate coagulation system activated by endotoxin: Evidence for enzymatic mechanism. J. Clin. Invest. 51:1790 (1972).

        8. 2020年版《中華人民共和國(guó)藥典》—— 1143細(xì)菌內(nèi)毒素檢查法

         

         

         

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